Orvosi Hetilap, 1987. március (128. évfolyam, 9-13. szám)

1987-03-01 / 9. szám - Hőgye Márta - Móczó István - Forster Tamás - Édes István - Béres Imre - Szabó Éva - Tószegi Anna - Gaál Tibor - Kovács Gábor - Csanády Miklós: Szívizom biopsiával igazolt "autoimmun myocarditisek" immunosuppresszív kezelésében szerzett tapasztalataink

A cardiomyopathia a szívizom elsődleges megbe­tegedése, amely nem ischaemiás, nem hypertonias, nem congenitalis, nem valvularis, nem pericardialis okból alakul ki. A diagnózis elsősorban kizárásos ala­pon állítható fel. A pathofiziológiai eltéréseket véve alapul az elfogadott felosztás szerint congestiv, hyper­­trophiás és restrictiv formákat lehet megkülönböztet­ni (13, 47). A congestiv cardiomyopathia (COCM) aetiológiai és pathogenetikai szempontból még meglehetősen tisz­tázatlan csoportja a myocardium betegségeknek. Az endomyocardialis biopsia bevezetésével (3, 10, 11, 20, 25, 33, 36, 37, 43) lehetőség nyílik histopatholó­­giai, immunhistológiai vizsgálatok elvégzésére és külön­böző kóroki, így immunpathológiai folyamatok, myo­­carditisek felderítésére is (7, 8, 15, 16,18, 49). Felmerül az a lehetőség is, hogy azokban az esetekben, ahol kó­ros immunmechanizmus mutatható ki, az immuno­­suppressiv terápia hasznos lehet az amúgy fatális prog­­nózisú betegség befolyásolásában. Az irodalmi adatok szerint (6, 26, 32, 40, 42) sem egységes még ez a kérdés. Több szerzőcsoport közlése szerint ez a kezelés remény­­teljes (6, 26, 32, 40), de az immunsuppressió helye még nem egyértelműen tisztázott a COCM terápiájában. Magunk is megpróbáltunk tapasztalatot szerezni saját beteganyagunk kezelése kapcsán, s eddigi tapasztala­tainkról jelen dolgozatunkban számolunk be. Beteganyag, módszerek A Szegedi OTE II. Belgyógyászati Klinika kardiológiai osztályán 1980 óta végzünk rendszeresen endomyocardialis biopsiát diagnosztikus célból az önálló Szívsebészeti Osztály haemodynamikai laboratóriumában. Eddig 35 congestiv car­­diomyopathiában szenvedő betegnél végeztünk biopsiát és ebből az első 29 betegünk adatait dolgoztuk fel. Minden esetben jobb és bal szívfél kathéterezés történt Seldinger technikával, majd kétirányú (RAO 30° és oldal irányú) bal kamrai angiocardio­­graphia, illetve Judkins szerint selectiv jobb és bal coronaro­­graphia Cardoscop-A Siemens készülékkel. A bal kamra functio vizsgálata során a RAO 30° síkú bal kamrai angiocardiogram­­mokból végdiastolés, végsystoles volumeneket és ejectios fractiot számoltunk, és a bal kamrai végdiastolés nyomást re­gisztráltuk. A kathéterezéssel egyidőben a vena femoralison át felvezetett Kings’ bioptommal, vagy transjugularisan honno bioptommal 4-5 szövetmintát vettünk a jobb kamrából (csúcs, septum), melyekből histopathológiai és immunhistológiai vizs­gálatokat végeztünk. A biopsiával nyert anyag egy részét 10%­­os formatinba helyeztük a fénymikroszkópos, más részét glu­­táraldehydbe az elektronmikroszkópos vizsgálatokhoz, míg a másik részét azonnal mélyhűtöttük az immunfluorescens fel­dolgozáshoz. Minden esetben rutin fény és elektronmikroszkópos, illet­ve direkt immunfluorescens vizsgálat történt a myocardium darabkákból. A standard direkt immunfluorescens (DIF) mód­szert (5) használtuk az immunpathológiai folyamatok vizsgá­latához. A betegek szívizombiopsiás anyagának nativ kryostá­­tos metszeteit a Humán Oltóanyag Termelő Vállalat FITC-vel jelölt antihumán-IgG, IgA, IgM és C3 conjugátumaival kezel­tük (hígítás 1 : 30x). Ezzel egyidőben a betegek savóját is vizs­gáltuk, melyekben keringő antitesteket kerestünk standard in­direkt immunfluorescens (IIF) módszerrel. Ehhez substratum-Haemodynamikai paraméterek EDV = end-diastolic volume ESV = end-systolic volume BKvd = bal kamrai végdiastolés nyomás BP v. PC = bal pitvari vagy pulmonális capillaris nyomás AP = artéria pulmonális nyomás PT = perctérfogat PTI = perctérfogat index­ként patkány parenchymás szervek fagyasztott natív metszetét (gyomor fundus, pajzsmirigy, máj, thymus, szívizom, vázizom) használták, 1 : 32-től 1 : 64 közötti savóhígítást alkalmazva. A detektáláshoz Leitz—Orthoplan fluorescens mikroszkópot, a fényképezéshez Orthomat automatikus fotoberendezést, va­lamint 27 din (Forte) fekete-fehér napfény filmeket alkalmaz­tunk, s itt is a Humán Oltóanyag Termelő Vállalat FITC-vel je­lölt immunsavóit használtuk. Minden esetben vizsgáltuk a be­tegeknél az egyéb konvencionális gyulladásra és autoellenanyag képzésre utaló adatokat (vörösvértest-süllyedés, vérkép, szérum összfehérje és fractiói, antinukleáris faktor, LE-sejt jelenség, latex stb.) is, valamint minden betegnél az antistreptolysin titert is meghatároztuk. Vírus etiológiát nem vizsgáltunk. A betegeknél HLA tipizálást is végeztünk minden esetben, azon­ban ezt bővebben jelenleg nem tárgyaljuk. A haemodynamikai és histológiai vizsgálatokkal egyidőben minden betegnél M- mód, ill. 2 dimenziós echocardiographia történt Smith—Kline Ekoline 20-A, ill. 30 echocardiograph-fal és 2 dimenziós Eko­­sector-10 készülékkel standard felvételi technikával (14,35). Az echocardiogrammokat analizáltuk (végsgstelés, végdrasto­­lés átmérőt, bal pitvart, aorta átmérőt mértünk), ill. az ezekből számítható non-invazív, bal kamra funkciót jelző paramétere­ket: lineáris és globális ejectios fractiót kalkuláltunk. A bal kamrai ejectios fractiót nemcsak a bal kamrai an­­giocardiogrammból és echocardiogrammokból számítottuk ki, hanem radioizotópos ventriculographia segítségével is meghatá­roztuk. A radioizotópos ventriculographia (RIVE) során an­­pirofoszfátos előkezelés után 99­ Tc-mal jelöltük a wt-ket In vivo (28). Equilibrium állapotban MB 9100 típusú gamma ka­merához kapcsolt MB 9101 kisszámítógépes adatfeldolgozó rendszerrel 30°-os jobb elülső félferde irányból (15°-os kaudális döntéssel) végeztünk adatgyűjtést, ill. számításokat. A betegek szisztematikus vizsgálatához, kezeléséhez és követéséhez mód­szertani protokollt dolgoztunk ki, amelyet a nagy egyéni varia­bilitások miatt nem lehetett szorosan, sémaszerűen alkalmazni, inkább nagyvonalakban képeztek keretet. 1. Congestiv cardiomyopathia diagnosztizálása: [Goodwin szerint (13) illetve a WHO (47) kritériumok alapján.) non-invasive + invasive — anamnesis (NYHA st.) (haemodynamikai vizsgálat:) — fizikális vizsgálat — BK-i angiocardiographia, — kétirányú szívfelvétel — coronarographia + mrtg — szívizombiopszia (rK-1) — echocardiographia (M-mód + 2DE) 1 — radioizotópos ventriculogia- szövettani vizsgálat phia (EF) 1 ) 1 fény- immun- elektron­­mik- fluor. mik­­roszk. (DIF) roszk. 2. Az immunológiáikig pozitív 11 esetnél a hagyományos ke­zelés mellett immunosuppressiv terápiát kezdtünk. Általában naponta 100 mg Azathioprint (Imuran) és 40 mg Prednisolont adtunk p.és az első 3 héten, majd másnaponta 100 mg Imurán adására tértünk át. A Prednisolon adagját csökkenteni kezdtük úgy, hogy egyik nap maradt a 40 mg, másik nap 5 mg-onként csökkentve a második 3 hetes periódus végére 0 mg lett (két napos ritmus). Amennyiben a beteg állapota javult, fokozatosan, lassan to­vább csökkentettük a gyógyszeradagokat, és 50 mg/2 nap Imuránt és 30 mg/2 nap Prednisolont tekintettünk tartós dó­zisnak és ezt tovább adtuk, otthonra is így javasoltuk. A be­tegeket többször visszarendeltük klinikai felvételre. Ha a beteg állapota még tovább javult, és kontroll szív­izom biopsiával ellenőrizve a szövettani képben az immunde­­positumok eltűntek, a gyógyszereket elhagytuk. Ha a beteg állapota lényeges változást nem mutatott, ak­kor is újabb biopsiát végeztünk, és ha a szövettani képben lá­tott immundepositumok változatlanok voltak, vagy csak mini­málisan csökkentek, tovább adtuk a gyógyszereket (50 mg/2 nap Imuran és 30 mg/2 nap Prednisolon). Ha az állapot romlott és a kontroll biopsiás leletben az immundepositumok mennyisége változatlanul sok volt, úgy mint a kezelés előtti kiindulási képben — Endoxan—Predniso­lon kombinációra tértünk át. Az első héten 200 mg/die Endoxánt adtunk i.v., utána ugyanezt a dózist p.os 3 hétig, majd másnaponta 200 mg-ot

Next